روش‌های مطالعه آزمایشگاهی و صحرایی گروههای مختلف بندپایان مهم پزشکی

لینک دانلود و خرید پایین توضیحات

فرمت فایل word  و قابل ویرایش و پرینت

تعداد صفحات: 21

روش‌های انجام عملیات صحرایی و آزمایشگاهی در حشره‌شناسی پزشکی 

تهیه و تنظیم:

مهندس احمدعلی حنفی ‌بجد

کلیاتی در مورد روش‌های مطالعه بندپایان مهم پزشکی در شرایط آزمایشگاهی و صحرایی

جمع‌آوری، نگهداری و کار با نمونه

هر متخصص حشره‌شناسی پزشکی، در حین انجام تحقیقات صحرایی مجبور به صید کردن نمونه‌ها و کار با آنهاست. این کار معمولاً شامل جمع‌آوری و نگهداری نمونه‌ها با روش‌های خاصی است که عمدتاً، و گاهی اوقات تنها روش‌هایی هستند که برای مطالعه گروه خاصی از بندپایان به کار می‌روند. این روش‌ها برای گروههای مختلف حشرات مهم پزشکی و همچنین در نقاط مختلف، متفاوت هستند. بنابراین، در ذیل به شرح برخی از نکات اساسی در این مورد می‌پردازیم و روش‌های تخصصی در فصل مربوط به هر گروه ارائه گردیده است.

اصول جمع‌آوری نمونه و کار با آن

لوازم جمع‌آوری

این وسایل از ساده‌ترین ابزار، از قبیل توری‌های حشره‌شناسی و لوله‌های صید، تا تله های بسیار تخصصی که برای اهداف خاصی به کار می‌رود، متفاوتند. نمونه‌گیری عبارتست از جمع‌آوری نمونه‌ها با یک روش استاندارد به منظور انجام مطالعه کمّی، که در آن می‌توان از ابزار بسیار متفاوتی استفاده نمود. در این قسمت فقط برخی از نکات ساده و اساسی که به صورت روتین مورد استفاده بوده و برای صید لازم هستند، مورد بررسی قرار گرفته‌اند. انواع مختلف تله‌ها برای صید حشرات به منظور انجام تحقیقات خاص به کار رفته‌اند. برخی از آنها حشرات را به صورت انفرادی و از طریق مکانیکی به دام می‌اندازند مثل تله‌های مکنده)، در حالیکه سایرین با استفاده از مواد جلب کننده از قبیل نور، دی‌اکسیدکربن و یا بوی بدن میزبان آنها را صید می‌کنند.

توری‌های حشره‌شناسی دستی (شکل 1) معمولاً شامل یک کیسه ساخته شده از توری‌های دارای سوراخ‌های ریز هستند که به دور یک قاب دایره‌ای متصل گردیده است. این قاب از جنس آلومینیوم بوده و طوری طراحی شده که می‌توان در موقع عدم استفاده، آن را از هم جدا نمود. به دلیل ریز بودن جثه اکثر حشرات و بندپایان مهم پزشکی، توری‌ها معمولاً در حشره‌شناسی پزشکی ارزش محدودی دارند. با وجود این، در مورد جمع‌آوری پشه‌ها از طریق حرکت جارویی بر روی رویش گیاهی و صید مگس‌های تسه‌تسه از روی میزبانهایشان، از آن‌ها استفاده می‌شود. هدف صید، مشخص کننده نوع مناسب توری است. در مورد حشرات مهم پزشکی، کار با کیسه‌های توری سفید راحت تر است، در حالی که برای جمع‌آوری پروانه‌ها توری سیاه طرفدار بیشتری دارد.

وسیله جمع‌آوری مهم دیگر در حشره‌شناسی پزشکی، آسپیراتور است (شکل 2). این وسیله که انواع مختلفی هم دارد، برای جمع‌آوری پشه‌ها و پشه‌خاکی‌ها از اماکن استراحتشان و حتی برای جمع‌آوری اکتوپارازیت‌هایی که وادار به ترک میزبانهایشان می‌شوند، مورد استفاده قرار می‌گیرد.

آسپیراتورها وسایل ساده، ولی مؤثری هستند که حشرات کوچک را از طریق مکیدن به داخل، صید می‌کنند. عمل مکش هوا هم توسط دهان فرد جمع‌آوری کننده و هم با وسایل حبابی شکل پلاستیکی صورت می‌گیرد. در برخی موارد هم فَن‌های کوچکی که با نیروی باتری کار می‌کنند، این عمل را به عهده دارند. ساده‌ترین نوع آسپیراتور، یک لوله شیشه‌ای یا پلاستیکی شفاف به طول حدود 25 سانتیمتر است که یک توری بر روی یک انتهای آن قرار گرفته و بر روی توری یک لوله بلند قابل انعطاف متصل شده است. انتهای دیگر لوله پلاستیکی قابل انعطاف در دهان فرد جمع‌آوری کننده قرار می‌گیرد و با عمل مکش هوا، حشرات را می‌توان به سادگی درون لوله شیشه‌ای کشید.

نوع دیگر آسپیراتور دارای یک قسمت شیشه‌ای یا لوله پلاستیکی به طول حدود 15-10 سانتیمتر است که دو انتهای آن توسط یک درپوش مسدود شده‌اند. یک لوله شیشه‌ای باریک که در هر دو انتها باز است از این درپوش عبور داده می‌شود. در کنار این لوله یک لوله پلاستیکی وجود دارد و حشرات از طریق انتهای لوله باریک دیگری وارد محفظه می‌شوند. یک تکه توری که روی انتهای داخلی لوله مکش قرار دارد، جلوی ورود نمونه‌ها را از محفظه به داخل حلق فرد جمع‌آوری کننده می‌گیرد.

بسیاری از حشرات مهم پزشکی را می‌توان حتی بدون استفاده از توری یا آسپیراتور و از طریق قرار دادن یک لوله آزمایش بدون لبه بر روی آنها که در حال استراحت یا خونخواری هستند، صید نمود. لوله‌ها یا ویال‌های دارای اندازه و شکل مختلف برای این کار مناسب هستند.

حشرات کوچک مثل پشه‌خاکی‌ها و میدج‌های Culocoides را می‌توان از طریق الکتریسیته ساکن که در لوله‌های پلاستیکی ایجاد می‌شود، به آنها چسباند و جمع‌آوری نمود؛ به ویژه این کار را می‌توان با لوله‌های ساخته شده از جنس پلی استیرن شفاف به خوبی انجام داد.

کشتن و نگهداری نمونه‌ها

مهمترین نکته‌ای که باید در حین کشتن و نگهداری نمونه مد نظر داشت، ویژگی‌هایی است که برای تشخیص آن به کار می‌روند. عدم توجه به این نکته در هر یک از مراحل اولیه می‌تواند تعداد زیادی از نمونه‌هایی را که به دقت جمع‌آوری شده‌اند، غیر قابل استفاده سازد. به عنوان مثال، پشه‌ها نباید در مایعات نگهداری شوند و یا توسط آنها جمع‌آوری گردند؛ زیرا فلس‌هایی را که بدن و بال‌هایشان را پوشانده از دست خواهند داد و این کار، تشخیص آنها را تقریباً غیر ممکن می‌سازد. همچنین کیفیت نمونه در بسیاری از حشرات و سایر بندپایان در صورتی که گذاشته شوند تا بمیرند، پایین خواهد آمد. برای شناسایی یا ذخیره طولانی مدت به صورت نمونه‌های مورد استفاده در شناسایی سایر نمونه‌ها (نمونه‌های مرجع)، باید آنها را از طریق تماس دادن با یکی از ترکیبات کشندة استاندارد، کشت. این مواد شامل استات اتیل، اتر، تتراکلرواتان و کلروفرم هستند که می‌توان آنها را روی یک تکه پنبه ریخت و پنبه آغشته را به همراه نمونه در یک بطری یا لوله شیشه‌ای گذاشت. حشرات را می‌توان از طریق سرما دادن (فریز کردن) نیز کشت (اگر چنین امکاناتی در شرایط صحرایی وجود داشته باشد). همچنین به عنوان آخرین راهکار می‌توان نمونه‌ها را از طریق تماس با دود سیگار کشت، اما توجه داشته باشید در این روش، لوازم به دود سیگار آلوده می‌شوندو برای جمع‌آوری‌های بعدی حشرات به صورت زنده، باید این نکته را مد نظر داشت. راه دیگر برای کشتن نمونه‌ها، استفاده از گرمای شدید نور آفتاب است. لاروها را می‌توان با انداختن در الکل کشت. افراد بالغ بندپایان کوچک را نیز می‌توان در الکل یا به صورت مونته در لام نگهداری نمود. لاروهای بزرگ دوبالان (مثل لارو مگس‌های موسیده یا کالیفوریده) را به به خوبی در آب جوش می‌توان کشت. نمونه‌ها در آب جوش شکل خود را حفظ می‌کنند و چروکیده نمی‌شوند. بخار حاصل از مایعات کشنده بر روی دیواره‌های بطری‌ها و لوله‌های مرگ، به ویژه در شرایط گرم نواحی گرمسیری، باقی می‌ماند و رعایت این نکته مهم است که نمونه‌ها به محض مردن باید برای سوزن زدن از شیشه مرگ خارج شوند. نمونه‌ها باید بلافاصله پس از مرگ، اندازه‌گیری و سوزن زده شوند و یا به روش دیگری ذخیره گردند تا از چروکیده و یا شکننده شدن زیاد آنها جلوگیری به عمل آید. این عمل به ویژه در مورد هر نمونه‌ای که در معرض کلروفرم قرار گرفته، باید انجام شود؛ ‌چون این ماده کشنده به سرعت بدن حشرات را سفت و شکننده می‌سازد.

سه روش اساسی نگهداری که به صورت عمومی مورد استفاده‌اند، عبارتند از: خشک، غوطه‌ور در مایع و مونته در لام.

نگهداری به صورت خشک، برای چندین گروه از بندپایان ناقل (پشه‌ها، مگس‌های سیاه، مگس‌های اسب و مگس‌های وزوزو -blowfly-) مطلوب و در برخی موارد ضروری است. اسکلت خارجی سخت بدن آنها اغلب ویژگی‌های مرفولوژیکی خارجی خود را حفظ می‌کند و این حشرات معمولاً به صورت سوزن زده شده نگهداری می‌شوند. نمونه‌های بزرگ (مثل مگس اسب جنس Tabanus) را می‌توان مستقیماً با روش‌های بالا مونته کرد، اما در مورد نمونه‌های کوچک لازم است که اول روی یک سوزن بسیار ریز سوزن زده شوند و سپس بر روی پایه قرار گیرند. یعنی نمونه‌هایی که با سوزن‌های بسیار ریز سوزن زده شده اند؛ روی قطعات کوچکی از موادی از قبیل پلی‌اورتان مونته می‌شوند و سپس این قطعات روی یک سوزن حمل کننده بلند فیکس می‌شوند (شکل 3). برای جلوگیری از خطر آسیب دیدن و شکستن، نمونه باید در نزدیکی وسط سوزن بسیار ریز فیکس شود. گاهی اوقات دیده می‌شود که برای مونته نمونه ابتدا سوزن بسیار ریز از پایه بلند عبور داده می‌شود و سپس نمونه به صورت اریب روی گوشه سوزن بسیار ریز قرار می‌گیرد. از این روش هرگز نباید استفاده شود. میکروسوزن‌های استیل ضد زنگ در چندین اندازه و قطر مختلف، برای نمونه‌های با اندازه‌های مختلف ساخته شده‌اند. کار با چنین سوزن‌هایی توسط پنس انجام می‌شود. روش مورد استفاده برای نمونه‌های کوچک، چسباندن آنها به قطعات کارت است. از به کار بردن سلولوئید و یا سایر مواد باید خودداری شود، چرا که نمونه‌ها اغلب پس از خشک شدن ماده چسبدار از بین می‌روند.

نگهداری به صورت مرطوب، برای بسیاری از بندپایان مهم پزشکی لازم است و برای حشرات در مرحله لاروی متداول می‌باشد. بعضی از حشرات بالغ (مثل اکتوپارازیت هایی از قبیل کک‌ها و شپش‌ها) و کنه‌ها به این روش نگهداری می‌شوند. در این روش، نمونه‌ها باید در یک مایع که از متلاشی شدن آنها جلوگیری می‌کند (اتیل الکل یا اتانول) قرار داده می‌شوند. از سایر مایعات نگهدارنده می‌توان به فرمالین و متیل الکل (متانول) اشاره کرد. با وجود این، اولی رنگ نمونه‌ها را تغییر می‌دهد و دومی آنها را ترد و شکننده می‌سازد. با گذشت زمان، همه مایعات نگهدارنده باعث سفید و بی‌رنگ شدن نمونه‌ها می‌شوند؛ اما نگهداری آنها در تاریکی، روند این کار را کند می‌سازد. بسیاری از انواع لوله‌ها یا ویال‌ها، برای نگهداری نمونه‌ها در اتانول مناسب هستند، اما این ماده از همه ظروف تبخیر می‌شود؛ حتی اگر درب آن بسته شده و یا یک چوب پنبه در درب آن قرار گرفته باشد. بنابراین، باید ویال‌ها و لوله‌ها برای امنیت در داخل یکسری جارهای بزرگتر که با الکل پر شده و درب آنها کاملاً ‌بسته و درزگیری شده، قرار داده شوند (شکل 4).

تعدادی از بندپایان مهم پزشکی از قبیل: میدج‌ها، پشه‌خاکی‌ها، کک‌ها و مایت‌ها باید برای شناسایی و نگهداری طولانی مدت پس از شناسایی، به صورت لام‌های میکروسکوپی مونته شوند. با وجود این، می‌توان آنها را به صورت موقتی در الکل هم نگهداری کرد. دو نوع اصلی از مواد مونته کننده وجود دارند:

موادی که محیط سازنده آنها آب است؛ مثل محیط‌های برلز و پوری.

موادی که محیط سازنده آنها حلال آلی است؛ مانند کانادا بالزام و اوپارال.

خدمات آزمایشگاهی در واحد نفت خام

لینک دانلود و خرید پایین توضیحات

فرمت فایل word  و قابل ویرایش و پرینت

تعداد صفحات: 6

 خدمات آزمایشگاهی در واحد نفت خام ، حلالها و روشهای تفکیک

-         نمونه برداری دقیق تحت شرایط استاندارد از نفت خام و مایعات گازی و فراورده ها اعم از اکتشافی ، تولیدی و صادراتی

-         اعیین مشخصات فیزیکی و شیمیایی و ترمودینامیکی (ارزیابی کامل) نمونه های نفت خام ، بررسی بمنظور تغییر کیفیت و کمیت محصولات نفتی در رابطه با شرایط کار واحدهای پالایش

-         بررسی جهت جداسازی و تهیه محصولات ویژه مواد اولیه لازم برای استفاده صنعت نفت و صنایع شیمیایی از مواد نفتی

-         پژوهش روشهای مختلف تفکیک و جداسازی مواد نفتی و مخلوطهای مواد شیمیایی و نیز گروه های هیدروکربنهای مختلف

-         بررسی و شناسایی و تولید انواع حلالهای شیمیایی – تینرها و حلالها نفتی مورد نیاز صنایع .

انجام تستهای استاندارد ، شامل :

-         تقطیر ASTM D-86

-         تقطیر IP -4

-         تقطیر Simulated Distillation  (ASTM – D 2887 )

-         تقطیر میکرو (از 1 تا 100 سی سی ) تحت فشار آتمسفریک و خلاء

-         تقطیر جزء به جزء روتاری Spinning Band Still  

-         تقطیر ASTM – D 2892

-         تقطیرASTM – D 1160

-         تقطیر Hemple

-         تقطیر مداوم Continuous (20 تا 50 لیتر در ساعت )

-         تقطیر ASTM – D 5236 برای تهیه روغنهای سنگین تا نقطه جوش 560 درجه سانتیگراد

-         تقطیر مولکولی برای تهیه برشهای رزین تا 700 درجه سانتیگراد

-         تعیین چگالی و وزن مخصوص مایعات ASTM  - D  و ASTM – D 1298

-         تعیین درجه API مایعات نفتی ASTM – D 4052

-         تعیین مقدار کل گوگرد مایعات و جامدات

-         تعیین مقدار گاز هیدروژن سولفوره و ترکیبات مرکاپیتان گوگرد در سیالات

-         تعیین میزان اسیدیته برشهای نفتی و نفت خام و حلالها

-         تعیین گرانروی مایعات

-         تعیین مقدار هیدروکربنهای آروماتیکی – نفتنیکی – الفینی و پارافینی

-         تعیین وزن مولکولی متوسط

-         تعیین فشار بخار Reid مایعات

-         تعیین مقدار هیدروکربنها بصورت مجزا و با شماره کربن آنها در برشهای نفتی Cn))

-         تعیین باقیمانده کربن بروش کنرادسون

-         تعیین باقیمانده کربن بروش رمزباتوم

-         تعیین مقدار خاکستر

-         تعیین مقدار واکس موجود در نمونه های ارسالی و نقطه ذوب آن

-         تعیین مقدار روغن در واکس

-         تعیین مقدار نمک در نفت خام

-         تعیین مقدار آب و رسوبات جامد در نفت خام و فراورده ها

-         تعیین مقدار آب در حد جزئی بروش کارل فیشر

-         تقطیر ناگهانی برشهای سنگین و باقیمانده ها و تهیه کاکس چارت

-         تعیین ضریب شکست نور مایعات در دماهای مختلف

-         تعییم اندازه ذرات جامد معلق در مایعات و غلظت آنها و همچنین تعیین اندازه ذرات پودرهای جامد

-         ضریب هدایت مایعات

-         تعیین ارزش حرارتی مواد بطور خالص و یا ناخالص

-         تعیین مقاومت اکسیداسیون سوختها

-         اندیس گرانروی روغنها

-         تصفیه روغنهای خام و تعیین پارامترهای کنترل کیفیت

-         شماره ستان نفت گاز

-         اندیس دیزل

-         نقطه آنیلین

-         نقطه اشتعال مایعات

-         نقطه آتش گیری مایعات

-         نقطه ابری شدن مایعات

-         نقطه انجماد

-         نقطه ریزش سیالات – دمای بسته شدن فیلتر گازوئیل

-         تعیین مقدار ترکیبات آسفالتین در نفت خام و باقیمانده های سنگین

-         تعیین مقدار آب امولسیون

-         خوردگی مس

-         خوردگی نقره برای سوخت جت

-         خوردگی ضد یخ

-         آزمایش ایجاد صمغ در بنرینها

-         نقطه ذوب جامدات

-         تعیین رنگ فراورده ها

-         نقطه دود سفید

-         مواد غیر محلول در پنتان نرمال

-         مواد غیر محلول در هپتان نرمال

-         مواد غیر محلول در تولوئن

-         آزمایشهای مربوط به ضد یخ و کولنت ها

-         آزمایشهای مربوط به تینرهای فوری – روغنی و کوره ای

روش‌های مطالعه آزمایشگاهی و صحرایی گروههای مختلف بندپایان مهم پزشکی

لینک دانلود و خرید پایین توضیحات

فرمت فایل word  و قابل ویرایش و پرینت

تعداد صفحات: 21

روش‌های انجام عملیات صحرایی و آزمایشگاهی در حشره‌شناسی پزشکی 

تهیه و تنظیم:

مهندس احمدعلی حنفی ‌بجد

کلیاتی در مورد روش‌های مطالعه بندپایان مهم پزشکی در شرایط آزمایشگاهی و صحرایی

جمع‌آوری، نگهداری و کار با نمونه

هر متخصص حشره‌شناسی پزشکی، در حین انجام تحقیقات صحرایی مجبور به صید کردن نمونه‌ها و کار با آنهاست. این کار معمولاً شامل جمع‌آوری و نگهداری نمونه‌ها با روش‌های خاصی است که عمدتاً، و گاهی اوقات تنها روش‌هایی هستند که برای مطالعه گروه خاصی از بندپایان به کار می‌روند. این روش‌ها برای گروههای مختلف حشرات مهم پزشکی و همچنین در نقاط مختلف، متفاوت هستند. بنابراین، در ذیل به شرح برخی از نکات اساسی در این مورد می‌پردازیم و روش‌های تخصصی در فصل مربوط به هر گروه ارائه گردیده است.

اصول جمع‌آوری نمونه و کار با آن

لوازم جمع‌آوری

این وسایل از ساده‌ترین ابزار، از قبیل توری‌های حشره‌شناسی و لوله‌های صید، تا تله های بسیار تخصصی که برای اهداف خاصی به کار می‌رود، متفاوتند. نمونه‌گیری عبارتست از جمع‌آوری نمونه‌ها با یک روش استاندارد به منظور انجام مطالعه کمّی، که در آن می‌توان از ابزار بسیار متفاوتی استفاده نمود. در این قسمت فقط برخی از نکات ساده و اساسی که به صورت روتین مورد استفاده بوده و برای صید لازم هستند، مورد بررسی قرار گرفته‌اند. انواع مختلف تله‌ها برای صید حشرات به منظور انجام تحقیقات خاص به کار رفته‌اند. برخی از آنها حشرات را به صورت انفرادی و از طریق مکانیکی به دام می‌اندازند مثل تله‌های مکنده)، در حالیکه سایرین با استفاده از مواد جلب کننده از قبیل نور، دی‌اکسیدکربن و یا بوی بدن میزبان آنها را صید می‌کنند.

توری‌های حشره‌شناسی دستی (شکل 1) معمولاً شامل یک کیسه ساخته شده از توری‌های دارای سوراخ‌های ریز هستند که به دور یک قاب دایره‌ای متصل گردیده است. این قاب از جنس آلومینیوم بوده و طوری طراحی شده که می‌توان در موقع عدم استفاده، آن را از هم جدا نمود. به دلیل ریز بودن جثه اکثر حشرات و بندپایان مهم پزشکی، توری‌ها معمولاً در حشره‌شناسی پزشکی ارزش محدودی دارند. با وجود این، در مورد جمع‌آوری پشه‌ها از طریق حرکت جارویی بر روی رویش گیاهی و صید مگس‌های تسه‌تسه از روی میزبانهایشان، از آن‌ها استفاده می‌شود. هدف صید، مشخص کننده نوع مناسب توری است. در مورد حشرات مهم پزشکی، کار با کیسه‌های توری سفید راحت تر است، در حالی که برای جمع‌آوری پروانه‌ها توری سیاه طرفدار بیشتری دارد.

وسیله جمع‌آوری مهم دیگر در حشره‌شناسی پزشکی، آسپیراتور است (شکل 2). این وسیله که انواع مختلفی هم دارد، برای جمع‌آوری پشه‌ها و پشه‌خاکی‌ها از اماکن استراحتشان و حتی برای جمع‌آوری اکتوپارازیت‌هایی که وادار به ترک میزبانهایشان می‌شوند، مورد استفاده قرار می‌گیرد.

آسپیراتورها وسایل ساده، ولی مؤثری هستند که حشرات کوچک را از طریق مکیدن به داخل، صید می‌کنند. عمل مکش هوا هم توسط دهان فرد جمع‌آوری کننده و هم با وسایل حبابی شکل پلاستیکی صورت می‌گیرد. در برخی موارد هم فَن‌های کوچکی که با نیروی باتری کار می‌کنند، این عمل را به عهده دارند. ساده‌ترین نوع آسپیراتور، یک لوله شیشه‌ای یا پلاستیکی شفاف به طول حدود 25 سانتیمتر است که یک توری بر روی یک انتهای آن قرار گرفته و بر روی توری یک لوله بلند قابل انعطاف متصل شده است. انتهای دیگر لوله پلاستیکی قابل انعطاف در دهان فرد جمع‌آوری کننده قرار می‌گیرد و با عمل مکش هوا، حشرات را می‌توان به سادگی درون لوله شیشه‌ای کشید.

نوع دیگر آسپیراتور دارای یک قسمت شیشه‌ای یا لوله پلاستیکی به طول حدود 15-10 سانتیمتر است که دو انتهای آن توسط یک درپوش مسدود شده‌اند. یک لوله شیشه‌ای باریک که در هر دو انتها باز است از این درپوش عبور داده می‌شود. در کنار این لوله یک لوله پلاستیکی وجود دارد و حشرات از طریق انتهای لوله باریک دیگری وارد محفظه می‌شوند. یک تکه توری که روی انتهای داخلی لوله مکش قرار دارد، جلوی ورود نمونه‌ها را از محفظه به داخل حلق فرد جمع‌آوری کننده می‌گیرد.

بسیاری از حشرات مهم پزشکی را می‌توان حتی بدون استفاده از توری یا آسپیراتور و از طریق قرار دادن یک لوله آزمایش بدون لبه بر روی آنها که در حال استراحت یا خونخواری هستند، صید نمود. لوله‌ها یا ویال‌های دارای اندازه و شکل مختلف برای این کار مناسب هستند.

حشرات کوچک مثل پشه‌خاکی‌ها و میدج‌های Culocoides را می‌توان از طریق الکتریسیته ساکن که در لوله‌های پلاستیکی ایجاد می‌شود، به آنها چسباند و جمع‌آوری نمود؛ به ویژه این کار را می‌توان با لوله‌های ساخته شده از جنس پلی استیرن شفاف به خوبی انجام داد.

کشتن و نگهداری نمونه‌ها

مهمترین نکته‌ای که باید در حین کشتن و نگهداری نمونه مد نظر داشت، ویژگی‌هایی است که برای تشخیص آن به کار می‌روند. عدم توجه به این نکته در هر یک از مراحل اولیه می‌تواند تعداد زیادی از نمونه‌هایی را که به دقت جمع‌آوری شده‌اند، غیر قابل استفاده سازد. به عنوان مثال، پشه‌ها نباید در مایعات نگهداری شوند و یا توسط آنها جمع‌آوری گردند؛ زیرا فلس‌هایی را که بدن و بال‌هایشان را پوشانده از دست خواهند داد و این کار، تشخیص آنها را تقریباً غیر ممکن می‌سازد. همچنین کیفیت نمونه در بسیاری از حشرات و سایر بندپایان در صورتی که گذاشته شوند تا بمیرند، پایین خواهد آمد. برای شناسایی یا ذخیره طولانی مدت به صورت نمونه‌های مورد استفاده در شناسایی سایر نمونه‌ها (نمونه‌های مرجع)، باید آنها را از طریق تماس دادن با یکی از ترکیبات کشندة استاندارد، کشت. این مواد شامل استات اتیل، اتر، تتراکلرواتان و کلروفرم هستند که می‌توان آنها را روی یک تکه پنبه ریخت و پنبه آغشته را به همراه نمونه در یک بطری یا لوله شیشه‌ای گذاشت. حشرات را می‌توان از طریق سرما دادن (فریز کردن) نیز کشت (اگر چنین امکاناتی در شرایط صحرایی وجود داشته باشد). همچنین به عنوان آخرین راهکار می‌توان نمونه‌ها را از طریق تماس با دود سیگار کشت، اما توجه داشته باشید در این روش، لوازم به دود سیگار آلوده می‌شوندو برای جمع‌آوری‌های بعدی حشرات به صورت زنده، باید این نکته را مد نظر داشت. راه دیگر برای کشتن نمونه‌ها، استفاده از گرمای شدید نور آفتاب است. لاروها را می‌توان با انداختن در الکل کشت. افراد بالغ بندپایان کوچک را نیز می‌توان در الکل یا به صورت مونته در لام نگهداری نمود. لاروهای بزرگ دوبالان (مثل لارو مگس‌های موسیده یا کالیفوریده) را به به خوبی در آب جوش می‌توان کشت. نمونه‌ها در آب جوش شکل خود را حفظ می‌کنند و چروکیده نمی‌شوند. بخار حاصل از مایعات کشنده بر روی دیواره‌های بطری‌ها و لوله‌های مرگ، به ویژه در شرایط گرم نواحی گرمسیری، باقی می‌ماند و رعایت این نکته مهم است که نمونه‌ها به محض مردن باید برای سوزن زدن از شیشه مرگ خارج شوند. نمونه‌ها باید بلافاصله پس از مرگ، اندازه‌گیری و سوزن زده شوند و یا به روش دیگری ذخیره گردند تا از چروکیده و یا شکننده شدن زیاد آنها جلوگیری به عمل آید. این عمل به ویژه در مورد هر نمونه‌ای که در معرض کلروفرم قرار گرفته، باید انجام شود؛ ‌چون این ماده کشنده به سرعت بدن حشرات را سفت و شکننده می‌سازد.

سه روش اساسی نگهداری که به صورت عمومی مورد استفاده‌اند، عبارتند از: خشک، غوطه‌ور در مایع و مونته در لام.

نگهداری به صورت خشک، برای چندین گروه از بندپایان ناقل (پشه‌ها، مگس‌های سیاه، مگس‌های اسب و مگس‌های وزوزو -blowfly-) مطلوب و در برخی موارد ضروری است. اسکلت خارجی سخت بدن آنها اغلب ویژگی‌های مرفولوژیکی خارجی خود را حفظ می‌کند و این حشرات معمولاً به صورت سوزن زده شده نگهداری می‌شوند. نمونه‌های بزرگ (مثل مگس اسب جنس Tabanus) را می‌توان مستقیماً با روش‌های بالا مونته کرد، اما در مورد نمونه‌های کوچک لازم است که اول روی یک سوزن بسیار ریز سوزن زده شوند و سپس بر روی پایه قرار گیرند. یعنی نمونه‌هایی که با سوزن‌های بسیار ریز سوزن زده شده اند؛ روی قطعات کوچکی از موادی از قبیل پلی‌اورتان مونته می‌شوند و سپس این قطعات روی یک سوزن حمل کننده بلند فیکس می‌شوند (شکل 3). برای جلوگیری از خطر آسیب دیدن و شکستن، نمونه باید در نزدیکی وسط سوزن بسیار ریز فیکس شود. گاهی اوقات دیده می‌شود که برای مونته نمونه ابتدا سوزن بسیار ریز از پایه بلند عبور داده می‌شود و سپس نمونه به صورت اریب روی گوشه سوزن بسیار ریز قرار می‌گیرد. از این روش هرگز نباید استفاده شود. میکروسوزن‌های استیل ضد زنگ در چندین اندازه و قطر مختلف، برای نمونه‌های با اندازه‌های مختلف ساخته شده‌اند. کار با چنین سوزن‌هایی توسط پنس انجام می‌شود. روش مورد استفاده برای نمونه‌های کوچک، چسباندن آنها به قطعات کارت است. از به کار بردن سلولوئید و یا سایر مواد باید خودداری شود، چرا که نمونه‌ها اغلب پس از خشک شدن ماده چسبدار از بین می‌روند.

نگهداری به صورت مرطوب، برای بسیاری از بندپایان مهم پزشکی لازم است و برای حشرات در مرحله لاروی متداول می‌باشد. بعضی از حشرات بالغ (مثل اکتوپارازیت هایی از قبیل کک‌ها و شپش‌ها) و کنه‌ها به این روش نگهداری می‌شوند. در این روش، نمونه‌ها باید در یک مایع که از متلاشی شدن آنها جلوگیری می‌کند (اتیل الکل یا اتانول) قرار داده می‌شوند. از سایر مایعات نگهدارنده می‌توان به فرمالین و متیل الکل (متانول) اشاره کرد. با وجود این، اولی رنگ نمونه‌ها را تغییر می‌دهد و دومی آنها را ترد و شکننده می‌سازد. با گذشت زمان، همه مایعات نگهدارنده باعث سفید و بی‌رنگ شدن نمونه‌ها می‌شوند؛ اما نگهداری آنها در تاریکی، روند این کار را کند می‌سازد. بسیاری از انواع لوله‌ها یا ویال‌ها، برای نگهداری نمونه‌ها در اتانول مناسب هستند، اما این ماده از همه ظروف تبخیر می‌شود؛ حتی اگر درب آن بسته شده و یا یک چوب پنبه در درب آن قرار گرفته باشد. بنابراین، باید ویال‌ها و لوله‌ها برای امنیت در داخل یکسری جارهای بزرگتر که با الکل پر شده و درب آنها کاملاً ‌بسته و درزگیری شده، قرار داده شوند (شکل 4).

تعدادی از بندپایان مهم پزشکی از قبیل: میدج‌ها، پشه‌خاکی‌ها، کک‌ها و مایت‌ها باید برای شناسایی و نگهداری طولانی مدت پس از شناسایی، به صورت لام‌های میکروسکوپی مونته شوند. با وجود این، می‌توان آنها را به صورت موقتی در الکل هم نگهداری کرد. دو نوع اصلی از مواد مونته کننده وجود دارند:

موادی که محیط سازنده آنها آب است؛ مثل محیط‌های برلز و پوری.

موادی که محیط سازنده آنها حلال آلی است؛ مانند کانادا بالزام و اوپارال.

خدمات آزمایشگاهی در واحد نفت خام

لینک دانلود و خرید پایین توضیحات

فرمت فایل word  و قابل ویرایش و پرینت

تعداد صفحات: 6

 خدمات آزمایشگاهی در واحد نفت خام ، حلالها و روشهای تفکیک

-         نمونه برداری دقیق تحت شرایط استاندارد از نفت خام و مایعات گازی و فراورده ها اعم از اکتشافی ، تولیدی و صادراتی

-         اعیین مشخصات فیزیکی و شیمیایی و ترمودینامیکی (ارزیابی کامل) نمونه های نفت خام ، بررسی بمنظور تغییر کیفیت و کمیت محصولات نفتی در رابطه با شرایط کار واحدهای پالایش

-         بررسی جهت جداسازی و تهیه محصولات ویژه مواد اولیه لازم برای استفاده صنعت نفت و صنایع شیمیایی از مواد نفتی

-         پژوهش روشهای مختلف تفکیک و جداسازی مواد نفتی و مخلوطهای مواد شیمیایی و نیز گروه های هیدروکربنهای مختلف

-         بررسی و شناسایی و تولید انواع حلالهای شیمیایی – تینرها و حلالها نفتی مورد نیاز صنایع .

انجام تستهای استاندارد ، شامل :

-         تقطیر ASTM D-86

-         تقطیر IP -4

-         تقطیر Simulated Distillation  (ASTM – D 2887 )

-         تقطیر میکرو (از 1 تا 100 سی سی ) تحت فشار آتمسفریک و خلاء

-         تقطیر جزء به جزء روتاری Spinning Band Still  

-         تقطیر ASTM – D 2892

-         تقطیرASTM – D 1160

-         تقطیر Hemple

-         تقطیر مداوم Continuous (20 تا 50 لیتر در ساعت )

-         تقطیر ASTM – D 5236 برای تهیه روغنهای سنگین تا نقطه جوش 560 درجه سانتیگراد

-         تقطیر مولکولی برای تهیه برشهای رزین تا 700 درجه سانتیگراد

-         تعیین چگالی و وزن مخصوص مایعات ASTM  - D  و ASTM – D 1298

-         تعیین درجه API مایعات نفتی ASTM – D 4052

-         تعیین مقدار کل گوگرد مایعات و جامدات

-         تعیین مقدار گاز هیدروژن سولفوره و ترکیبات مرکاپیتان گوگرد در سیالات

-         تعیین میزان اسیدیته برشهای نفتی و نفت خام و حلالها

-         تعیین گرانروی مایعات

-         تعیین مقدار هیدروکربنهای آروماتیکی – نفتنیکی – الفینی و پارافینی

-         تعیین وزن مولکولی متوسط

-         تعیین فشار بخار Reid مایعات

-         تعیین مقدار هیدروکربنها بصورت مجزا و با شماره کربن آنها در برشهای نفتی Cn))

-         تعیین باقیمانده کربن بروش کنرادسون

-         تعیین باقیمانده کربن بروش رمزباتوم

-         تعیین مقدار خاکستر

-         تعیین مقدار واکس موجود در نمونه های ارسالی و نقطه ذوب آن

-         تعیین مقدار روغن در واکس

-         تعیین مقدار نمک در نفت خام

-         تعیین مقدار آب و رسوبات جامد در نفت خام و فراورده ها

-         تعیین مقدار آب در حد جزئی بروش کارل فیشر

-         تقطیر ناگهانی برشهای سنگین و باقیمانده ها و تهیه کاکس چارت

-         تعیین ضریب شکست نور مایعات در دماهای مختلف

-         تعییم اندازه ذرات جامد معلق در مایعات و غلظت آنها و همچنین تعیین اندازه ذرات پودرهای جامد

-         ضریب هدایت مایعات

-         تعیین ارزش حرارتی مواد بطور خالص و یا ناخالص

-         تعیین مقاومت اکسیداسیون سوختها

-         اندیس گرانروی روغنها

-         تصفیه روغنهای خام و تعیین پارامترهای کنترل کیفیت

-         شماره ستان نفت گاز

-         اندیس دیزل

-         نقطه آنیلین

-         نقطه اشتعال مایعات

-         نقطه آتش گیری مایعات

-         نقطه ابری شدن مایعات

-         نقطه انجماد

-         نقطه ریزش سیالات – دمای بسته شدن فیلتر گازوئیل

-         تعیین مقدار ترکیبات آسفالتین در نفت خام و باقیمانده های سنگین

-         تعیین مقدار آب امولسیون

-         خوردگی مس

-         خوردگی نقره برای سوخت جت

-         خوردگی ضد یخ

-         آزمایش ایجاد صمغ در بنرینها

-         نقطه ذوب جامدات

-         تعیین رنگ فراورده ها

-         نقطه دود سفید

-         مواد غیر محلول در پنتان نرمال

-         مواد غیر محلول در هپتان نرمال

-         مواد غیر محلول در تولوئن

-         آزمایشهای مربوط به ضد یخ و کولنت ها

-         آزمایشهای مربوط به تینرهای فوری – روغنی و کوره ای

دانلود فایل کار آموزی علوم آزمایشگاهی دامپزشکی .

کار آموزی علوم آزمایشگاهی دامپزشکی

محل کار آموزی:آزمایشگاه دامپزشکی دکتر علیپور

محل کارآموزی :آزمایشگاه دامپزشکی دانشگاه آزاد شبستر

فرمت فایل: ورد

تعداد صفحات:110

بخش هایی از متن:

کار آموزی انگل شناسی علوم آزمایشگاهی دامپزشکی

بررسی آلودگی انگلی لوله گوارش پرنده گان زینتی

در پائیز سال 88 که دوره کارآموزی را در آنجا طی میکردم فروشنده پرندگان زینتی به آزمایشگاه مراجعه کرد و در مورد اینکه این فروشگاه حدود 70قطعه پرنده زینتی داشته(25تا قناری 45تا مرغ عشق)که از این تعداد چند تا از مرغ عشقی و قناری های اینجانب تلف شده و چند تای دیگر نیز شدیدأ بیمار هستند.

ما به فروشگاه رفتیم و اولین کاری که کردیم ابتدا سینی زیر قفس را تمیز کردیم و هم اندازه سینی روزنامه قرار دادیم وبعد از دو الی سه ساعت،نمونه مدفوع را با کارتک به داخل ظرف نمونه برداری منتقل کرده و به آزمایشگاه بردیم و چند تا از پرنده هایی که تلف شده بودند نیز به آزمایشگاه بردیم.

البته علایم ظاهری پرندگان را نیز بررسی کردیم که علایمی نظیر بی اشتهایی،کاهش وزن،اسهال و بی حالی بود.

در آزمایشگاه برای اینکه تخم کرمها و اووسیت کوکسیدیاها در نمونه مدفوع را پیدا کنیم از روش شناور سازی با سانتریفوژ و محلول سلفات روی استفاده کردیم.

از بی کرومات پتاسیم3% برای کشت مدفوع جهت تشخیص تفریقی بین اووسیت گونه های ایمریا و ایزوسپورا استفاده کردیم.پس از کشت مدفوع اووسیت های اسپوریله ایمریا وایزوسپورا به راحتی از هم تفکیک می شود(اووسیت اسپوریله ایزوسپورا دارای دو اسپوروسیت که هر یک 4اسپوروزوئیت دارد ولی اووسیت های اسپوریله ایمریا واجد 4اسپوروسیت که هر یک 2اسپوروزوئیت است).

پرندگانی که تلف شده بودند را کالبد گشایی کردیم و از قسمت های مختلف بدن نمونه گیری کردیم .

در آزمایش مدفوع نمونه ها،8تا مرغ عشق و12تا از قناری آلوده به تخم نماتود بودندولی اندازه تخم و شکل بیضی بودن تخم،به گونه آسکاریدا شبیه بود.

در کالبد گشایی جراحات اتوکسو پلاسما در اندامهای خارج روده ی مانند بزرگ شدن کبد وطحال دیده نشد و همچنین در گسترش های تهیه شده از کبد،خون وطحال نیز انگل مشاهده نگردید.نمونه به ایزوسپورای قناری تشخیص داده شد.

کار آموزی میکروبیولوژی علوم آزمایشگاهی دامپزشکی

در میکروبیولوژی برای اینکه باکتری را جدا سازی کنیم یا نوع باکتری را شناسایی کنیم باید در نحوه نمونه گیری و ارسال نمونه دقت کنیم.نمونه ای به آزمایشگاه توسط دامدار آورده شده بود که اذعان میکرد تعدادی از گاو ها مریض شده اند و علایم چرک و اسهال و بیحالی وبی اشتهایی داشتند که توسط دامپزشک نمونه گیرئ انجام شده بود.

نمونه ها را درظروف پلاستیکی تمیز و دهان گشاد دربدار جمع‌آوری کرده بود و نمونه ها روسریعا به آزمایشگاه ارسال کرده بود.

اولا نمونه باید دارای مشخصات نام دام، نام دامپزشک، شماره آزمایشگاه، تاریخ و زمان جمع آوری نمونه باشد. برگ درخواست دامپزشک باید ضمیمه شده و در آن اطلاعات اضافی مانند تشخیص احتمالی بیماری با توجه به علائم آن و یا تاریخچه دام ذکر گردیده باشد.

باید توجه نمود که چون هر نمونه مدفوع می تواند به عنوان یک منبع مهم باکتری، ویروس و انگل باشد، لذا باید به عنوان یک منبع آلوده کننده مهم محسوب کنیم.

وقتی محل نمونه برداری و عارضه ایجاد شده را در توضیحات نمونه مشاهده کردیم تا حدی به ما کمک کرد تاحدی باکتری را بشناسیم.

اولا چون باکتری با میکرو ارگانیسم های دیگر مخلوط است ما باید کشت خالص تهیه می کردیم تا به تک کلنی برسیم وبعد تک کلنی را به پلیت های جدید انتقال بدهیم.

مرحله بعدی روش ساده بود:

گسترش را انجام میدیم بعد از 1الی 2 دقیقه در ریل رنگ آمیزی یعنی اول متیلن بلو به مدت1دقیقه، بعدشستشو،سپس سافرانین به مدت 1 دقیقه،بعد شستشو،بعد مالاشین   گرین ،بعد شستشو،در آخر خشک کردیم و زیر میکروسکوپ نگاه کردند.

روش بعدی که بود روش تشخیص گرم باکتری:

در مورد گرم باکتری، که گرم مثبت است یا نه.

اولین کار گسترش است بعد از فیکس کردن گسترش،در کریستال ویوله به مدت یک دقیقه قرار دادیم بعد شستشوبا آب مقطرانجام دادیم سپس در محلول لوگول به مدت 1دقیقه قرار دادیم باز هم با آب مقطر شستشو دادیم بعد الکل استون زدیم دوباره شستشو انجام دادیم در مرحله بعدی در رنگ فوشین به مدت1 دقیقه قرار دادیم بعد از آن شستشو با آب مقطر ودر آخر خشک کردیم.

اگر باکتری به رنگ بنفش یا آبی شد باکتری گرم مثبت است ولی اگر به رنگ قرمز شد باکتری گرم منفی است.

روشهای دیگری هم برای تعیین گرم باکتری ها از جمله snet(KOH)(یک قطره KOHرا روی لام میریزیم اگر کش رفت گرم منفی می باشد)،)maccankyیک محیط کشتی است که باکتری گرم مثبت در آن رشد نمی کند ولی گرم منفی رشد می کند)،vankomaycin )یک آنتی بیوتیک است که باکتریهای گرم مثبت به آن حساس اند ولی گرم منفی ها مقاوم هستند) ،lANAو اکسیداز(با آنس باکتری را بر می داریم وبهکاغذ صافی میزنیم اگر رنگ ارغوانی تشکیل شد گرم+ واگر تشکیل نشد گرم -)، کاتالاز(یک قطره از آب اکسی‍‍‍ژنه را روی لام قرار می دهیم بعد باکتری را با آنس برداشته،با آب اکسیژنه قاطی می کنیم اگر گاز خارج شد گرم+،در غیر اینصورت گرم-)،تست Of(تستی است که بعد از تشخیص گرم باکتری حائز اهمیت است.)تست حرکت(SIM) می باشد.که هر کدام از این مراحل را انجام دادیم. چون نمونه از قسمت روده ای برداشته شده بود لازم بود که از محیط مکانکی و EMBهم استفاده شود.بعد این آزمایشات باکتری گرم – شد.

محیط هایی که استفاده کردیم تا باکتری را بیابیم شامل:

از پلیت ها(بلاد آگار،مکانکی،EMB)

ازلوله ها(OF،اوره از،VPMR،SIM،ژلاتین،اینوسیتول،رامنوز،

ساکروز،سوربیتول،لاکتوز،مالتوز،مانیتول،مانوز،زایلوز).

بعد از اینکه در این محیط ها کشت دادیم اینارو در 37درجه به مدت 24-48ساعت در انکوباتور قرار دادیم.

روز قراعت اول به پلیت ها نگاه کردیم،در بلاد آگار رشد نداشت ولی در EMBبه صورت جلای فلزی رشد کرده بود وهمینطور در مکانکی هم کاملا رشد کرده بود.بعد به لوله ها نگاه کردیم،

اوره از منفی

ژلاتین منفی

OF   fermentative

کاتالاز مثبت

اکسیداز منفی

سیترات منفی

MR مثبت

VP   منفی

Indole   مثبت

Motility   مثبت

تمام قندها به غیر از اینوسیتول   مثبت

نتایج آزمایشات نشان داد باکتری مورد نظر Escherichia coli می باشد.اولا فقط در E.coli، EMB بصورت جلای فلزی می باشد.دوم اینکه محیط مکانکی لاکتوز شدیدا مثبت بود.سوم اینکه اوره از منفی بود.

کارآموزی کلینیکال پاتولوژی علوم آزمایشگاهی دامپزشکی

محل کارآموزی :آزمایشگاه دامپزشکی دانشگاه آزاد شبستر

کیسی که بیشتر دربخش کلینیکال آزمایشگاه بررسی کردیم طیور بود به یکی از مرغداری های منطقه جهت بررسی سالم بودن مرغ ها مراجعه کردیم.

اول دکتر به علایم ظاهری کیس ها نگاه کرد که هیچگونه علایم خاصی مشاهده نداشتند.

برای اطمینان از سالم بودن خون گیری کردیم.

به صورت تصاعدی از چند مرغ خون گیری از ورید بال انجام دادیم در همان جا به دلیل تازه بودن خون،گسترش خونی تهیه کردیم ورنگ آمیزی کردیم.

نمونه رادر لوله آزمایش که حاوی ماده ضد انعقادسیترات دکستروز بود ریختیم.ماده ضد انعقاد سیترات دکستروز بهترین ماده برای انتقال خون است.

برای شمارش سلول های خونی در دستگاه سلکانتر انجام دادیم.برای اینکه مطمئن بشیم به روش دستی آزمایشات را انجام دادیم.

وسایلی که مورد نیاز بود شامل:لام نئوبار،لامل سنگی،سمپلر وسر سمپلر،لوله آزمایش،محلول رقیق کننده.

ابتدا روی لام نئوبار یک قطره خون ریختیم طوری که به شیارها وبیرون نریزد بعد لامل را روی آن گذاشتیم سپس زیر میکروسکوپ گلبولهای قرمز وسفید رو بررسی کردیم .

شمارش diffگلبولهای سفید را انجام دادیم تا ببینیم سلول ها را از لحاظ در صد و شکل مشکل دارند یا خیر.

روش هماتوکریت نیز انجام دادیم ابتدا 3/2نمونه خونی را در چند لوله ریختیم و به یک طرف خمیر هماتوکریت زدیم.لوله ها را در سانتریفوژ به طور موازی قرار دادیم و به مدت 5 دقیقه در دور 12000سانتریفوژ کردیم و بعد از سانتریفوژ آنها را قرائت کردیم .

در مورد تشخیص بیماری به خاطر اینکه نخواستند بیماری را بدانیم به ما چیزی نگفتند.